小鼠听觉系统与人类高度同源，而耳蜗基底膜上的毛细胞更是听觉信号传导的核心单元 —— 毛细胞一旦损伤便会引发不可逆听力丧失，因此精准获取完整、活性良好的耳蜗基底膜，是解析听觉机制、探索耳聋病因、开发治疗方案的首要前提。
但小鼠耳蜗仅绿豆大小，基底膜以毫米计，需全程显微镜下精细操作。灵赋拓普生物于本文整理了标准化 “七步取材法” 及实操技巧，帮你避开坑点、高效获取高质量样本。
1. 解剖取颞骨：奠定样本基础
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操作流程：小鼠安乐死后，将头部用 75% 乙醇消毒；在显微镜下沿头部正中从枕骨大孔处剪开颅骨，小心取出脑组织（避免牵拉损伤内耳），最后取下双侧含耳蜗、前庭及半规管的颞骨块。
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实操提示：剪颅骨时力度需轻柔，避免剪刀尖端触碰内耳组织，若脑组织粘连紧密，可先用生理盐水轻微冲洗再分离。
2. 暴露耳蜗：精准去除冗余结构
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操作流程：取下含内耳组织的颞骨块后，逐层去除表面的膜性组织及软骨环样结构，直至清晰暴露耳蜗、圆窗和前庭窗。
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关键注意：软骨环韧性较强，不可直接撕扯，需沿边缘缓慢剥离，防止连带损伤耳蜗外壁。
3. 打开耳蜗：把控力度是核心
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操作流程：在显微镜下，用精细针头在耳蜗顶端开一个小窗，再在底部开第二个小窗。力度需恰到好处 —— 过大易破坏内部结构，过小则无法形成后续操作通道。
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练习建议：新手可先在废弃颞骨上练习针头力度，熟悉 “刚穿透骨壁、不触及内部” 的手感后再操作正式样本。
4. 灌注固定：维持样本生理状态
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操作流程：通过开好的小窗缓慢灌注固定液，使耳蜗内结构保持其生理状态。灌注的速度和压力都有讲究，需避免因操作不当破坏细胞形态。
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核心原则：灌注需匀速缓慢，防止压力骤增冲散毛细胞或基底膜，确保固定液充分覆盖所有区域。
5. 脱钙软化：取出完整基底膜的关键
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操作流程：将固定后的耳蜗放入脱钙液中浸泡，软化骨头。这一步是后续顺利剥离基底膜的关键 —— 脱钙不足会导致骨头过硬、无法分离，脱钙过度则可能破坏细胞结构。
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判断标准：可通过镊子轻捏骨壁判断软化程度，以 “骨壁能轻微变形但不碎裂” 为宜。
6. 剥离软组织：暴露螺旋状基底膜
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操作流程：待耳蜗软化后，轻轻剥离内部的前庭膜和其他软组织，此时螺旋形的基底膜会逐渐暴露。
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操作技巧：软组织与基底膜可能存在粘连，可借助针尖轻轻挑起软组织，避免直接拉扯导致基底膜断裂。
7. 分离基底膜：最后一步定成败
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操作流程：用精细镊子和精细解剖刀，贴近骨螺旋板轻轻分离基底膜，全程需保持动作平缓，确保基底膜完整性。
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重点提醒：这是最关键的一步，若发现基底膜有撕裂风险，可暂停操作，调整镊子角度后再继续，切勿急躁。
成功获取高质量基底膜，离不开以下四点核心积累： -
工具适配性：精细针头、镊子、解剖刀是必备工具，工具的精细度直接影响操作精度 —— 劣质工具易导致样本划伤或破损，需优先选择适配微小结构操作的专用工具。
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及时固定：组织固定不及时会导致细胞自溶，此前所有操作都会前功尽弃。建议小鼠安乐死后，30 分钟内启动固定流程，最大限度保留样本活性。
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稳定与耐心：操作时可将肘部支撑在实验台面上，减少手部抖动；遇到组织粘连、剥离困难时，切勿强行操作，可暂停 1-2 分钟调整状态，耐心是避免失误的关键。
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反复练习：没有人第一次就能做出完美的基底膜取材。建议先用废弃样本练习 3-5 次，熟悉各步骤手感后再操作正式样本，通过反复实操积累经验，逐步提升成功率。
合格的基底膜样本，可支撑多类关键实验，为听觉研究提供有力支撑： -
免疫荧光染色：标记特定蛋白（如毛细胞特异性蛋白），观察其在基底膜上的表达与定位；
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电生理记录：通过膜片钳等技术，研究毛细胞的机械电转导特性，解析听觉信号传导机制；
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基因表达分析：提取基底膜组织 RNA，开展 qPCR、测序等实验，探索听觉相关基因网络；
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药物筛选：将基底膜暴露于潜在治疗化合物中，检测毛细胞存活率，评估药物的听力保护效果。
无论是刚接触耳蜗取材的新手，还是需要优化流程的研究者，若在实操中遇到力度把控、脱钙时间判断等问题，都可交流探讨。灵赋拓普生物也能提供从取材到后续实验的技术支持，助力大家高效获取合格样本，少走弯路，推进听觉领域研究更顺利开展。
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